1. 紫外消毒30min后關(guān)閉紫外燈,開(kāi)啟超凈臺(tái)正常工作狀態(tài),用酒精消毒操作者的雙手。
2. 將所需的培養(yǎng)基,胰酶確保瓶身干凈后放于工作臺(tái)面內(nèi),點(diǎn)燃酒精燈,將培養(yǎng)基和胰酶瓶口用酒精棉球擦拭后,再將瓶口對(duì)準(zhǔn)在酒精燈上消毒2-3次,旋開(kāi)瓶蓋后再次分別消毒瓶口和瓶蓋,分別放于酒精燈的兩側(cè)。特別是將培養(yǎng)基瓶放于斜架上,瓶口對(duì)準(zhǔn)酒精燈,且放在距離酒精燈近的位置,瓶蓋置于酒精燈的另一側(cè)。
3. 將培養(yǎng)瓶瓶口在酒精燈上消毒2-3次,旋開(kāi)后分別再次消毒瓶口和瓶蓋2-3次,瓶蓋放于酒精燈右側(cè)后將培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)的培養(yǎng)液懸空倒進(jìn)污缸,在酒精燈消毒2-3次瓶口,豎直放好。取1ml移液器快速移動(dòng)在酒精燈上消毒1-2次,然后再裝上槍頭吸取1.5ml胰酶液,懸空移入培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)。
4. 將培養(yǎng)瓶平放使胰酶浸沒(méi)整個(gè)瓶壁的細(xì)胞層,計(jì)時(shí)約40s,立馬豎起對(duì)著燈光可觀察到細(xì)胞與細(xì)胞之間有針孔樣縫隙,并有1-2個(gè)細(xì)胞脫落,這時(shí)為胰酶消化的合適時(shí)機(jī)。若看到成片的細(xì)胞從瓶壁脫落為胰酶消化過(guò)度;若看不到針孔樣縫隙和細(xì)胞脫落,則需繼續(xù)消化,輕輕的迅速平放培養(yǎng)瓶使胰酶浸沒(méi)細(xì)胞層1s后迅速豎起對(duì)著燈光觀察細(xì)胞情況,可反復(fù)幾次,直至出現(xiàn)針孔樣縫隙和1-2個(gè)細(xì)胞脫落的好消化狀態(tài)。用移液器將胰酶吸凈。
5. 吸取1ml培養(yǎng)基于培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),并用移液器吸取少量的培養(yǎng)基輕柔的反復(fù)沖洗培養(yǎng)瓶壁5-8次,使貼壁細(xì)胞完全脫落于培養(yǎng)基內(nèi)再輕輕吹打2-3次,使細(xì)胞盡可能處于單個(gè)懸浮狀態(tài)。
6. 取2或3個(gè)高壓后的新培養(yǎng)瓶,瓶口在酒精燈上消毒2-3次,旋開(kāi)后分別再次消毒瓶口和瓶蓋2-3次分別放于酒精燈兩側(cè),然后將細(xì)胞培養(yǎng)基均勻的分到3或4個(gè)培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)(注意原來(lái)傳代時(shí)使用的培養(yǎng)瓶可繼續(xù)傳代使用),進(jìn)行1傳3或1傳4的培養(yǎng)。
7. 拿出1支高壓后的5ml定量移液管,在酒精燈上灼燒尾部后裝于電動(dòng)移液器上,再次放于酒精燈上灼燒整個(gè)定量移液管管身2-3次,懸空進(jìn)入培養(yǎng)基瓶?jī)?nèi)吸取4ml培養(yǎng)基懸空移入每個(gè)培養(yǎng)瓶?jī)?nèi),將培養(yǎng)瓶瓶口和瓶蓋在酒精燈上消毒2-3次后擰緊平放,在瓶身做好實(shí)驗(yàn)標(biāo)記。
8. 將培養(yǎng)基瓶口和瓶蓋消毒2-3次后擰緊,熄滅酒精燈,整理實(shí)驗(yàn)臺(tái)面,取出實(shí)驗(yàn)試劑及污缸等,關(guān)閉超凈工作臺(tái)。
9. 將培養(yǎng)瓶放于28℃,5%CO2的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),旋開(kāi)瓶口少許。注意整個(gè)培養(yǎng)箱底托盤(pán)內(nèi)一定要放高壓后的水,且定期更換確保無(wú)菌。
每天定時(shí)觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況,一般72-96h后,細(xì)胞生長(zhǎng)密度大于90%,即可進(jìn)行細(xì)胞的傳代或保株。
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